иала при подготовке к занятиям, зачетам и экзамену по дисциплине.
Для студентов медицинского и биологического профилей высших учебных заведений, а также для молодых ученых-морфологов.
Список сокращений
АДГ – антидиуретический гормон
АКТГ – адренокортикотрогшый гормон
АТФ – аденозинтрифосфат
ГМК – гладко-мышечные клетки
ГМТ – гладкая мышечная ткань
ДНК – дезоксирибонуклеиновая кислота
ДЭС – диффузная эндокринная система
КЦ – клеточный цикл
КЯП – комплекс ядерной поры
ЛГ – лютеинизирующий гормон
ОП – окаймленный пузырек
ПНС – периферическая нервная система
иРНК – информационная рибонуклеиновая кислота
рРНК – рибосомная рибонуклеиновая кислота
тРНК – транспортная рибонуклеиновая кислота
РТК – рецепторные Т-клетки
СКК – стволовые кроветворные клетки
ТТГ – тиреотропный гормон
ТЭМ – трансмиссионная электронная микроскопия
ФК – фузогенный комплекс
ФСГ – фолликулостимулирующий гормон
ЦНС – центральная нервная система
ЭПС – эндоплазматическая сеть
Глава 1
Гистологическая техника
Гистология, как и любая другая наука, имеет свои задачи и специфические методы исследования материала. Основным методом является изучение фиксированных и окрашенных гистологических препаратов под микроскопом в проходящем свете.
Традиционный способ подготовки материала для получения гистологического препарата включает следующее: 1) фиксацию материала; 2) промывку фиксированного материала; 3) обезвоживание и уплотнение материала; 4) приготовление блоков; 5) изготовление срезов (резка); 6) окрашивание срезов; 7) заключение и маркировку срезов.
1.1. Фиксация материала
Цель фиксации – максимально закрепить и сохранить в обрабатываемой ткани или органе его прижизненную структуру. После фиксации материал разрезают или расщепляют, чтобы получить срезы толщиной 5—20 мкм. Затем полученные срезы окрашивают или обрабатывают соответствующими способами для приготовления постоянных гистологических препаратов, способных сохраняться длительное время.
Фиксатор (фиксирующая жидкость) должен обладать следующими качествами: быстро проникать в ткани и коагулировать белки исследуемого материала – ткани или органа для исключения аутолиза; сводить до минимума деформацию (сморщивание или набухание) объекта; легко удаляться при промывке водой и не мешать дальнейшей обработке (уплотнению и окрашиванию) изучаемого материала.
Количество фиксатора по объему должно быть, как правило, в 100 раз больше объема фиксируемого материала. Используют фиксатор только один раз. Величина фиксируемого кусочка должна быть минимальной – не более 1 см3 или 1 см в одном измерении, а в особых случаях не превышать 1 мм3.
Продолжительность фиксации – не менее 24 ч, при других методиках и экспресс-диагностике – от 3–5 мин до 6 ч. Большие колебания времени фиксации зависят от применяемых методик, специфики материала и фиксатора.
Из наиболее распространенных фиксаторов чаще всего применяют следующие:
1) формалин (10–20 % водный раствор);
2) этиловый спирт (этанол) 80–96 %;
3) смесь спирта с формалином (спирт-формол): 70 % этилового спирта 10 мл и 10–20 % раствора формалина 4 мл;
4) жидкость Мюллера: калия двухромовокислого 2,5 г, натрия сульфата 1 г, воды 100 мл;
5) жидкость Ценкера: жидкости Мюллера 100 мл, сулемы 5 г, ледяной уксусной кислоты (добавляют сразу перед употреблением фиксатора) 5 мл;
6) жидкость Максимова (ценкер-формол): жидкости Ценкера 90 мл, формалина 10–20 % 10 мл.
1.2. Промывка фиксированного материала
Промывка материала (кусочки органов, тканей или небольшие органы целиком, особенно от мелких экспериментальных животных) в водопроводной проточной воде, как правило, продолжается столько же, сколько длилась фиксация, чаще 18–24 ч. Затем фиксированные ткани и органы должны быть подготовлены для получения срезов различного типа: целлоидиновых, парафиновых или замороженных.
1.3.
